生物學最熱門作者最新《Nature》文章
日期：2011-01-10 19:43:47
來自麻省理工學院，Whitehead生物醫藥研究所，霍德華休斯醫學院的研究人員提出了一種新的轉錄組測序高通量方法，這種方法能避免“poly(A)”方法的局限性，對于轉錄組測序方法的發展具有重要意義。這一研究成果公布在Nature雜志上。
領導這一研究的是麻省理工學院的David P. Bartel教授，這位microRNA方面世界級的領軍人物湯姆森科技信息集團公布的“生物學領域最熱門的機構、作者、期刊排名”中，入選高影響力論文數量排名作者：Bartel教授的19篇高影響力論文共被引4542次，每篇論文平均被引239.1次。Bartel教授主要從事的研究包括RNAi，miRNAs以及small RNAs分子等方面。
轉錄組（transcriptom）廣義上指某一生理條件下，細胞內所有轉錄產物的集合；狹義上指所有mRNA的集合。蛋白質是行使細胞功能的主要承擔者，蛋白質組是細胞功能和狀態的最直接描述，而由于目前蛋白質實驗技術的限制，轉錄組成為研究基因表達的主要手段。轉錄組是連接基因組遺傳信息與生物功能的蛋白質組的必然紐帶，轉錄水平的調控是目前研究最多的，也是生物體最重要的調控方式。轉錄組測序可以得到特定條件下所有mRNA轉錄本的豐度信息，從而發現新的轉錄本和可變剪接體。
以往的轉錄組測序原理是當基因轉錄成RNA時，聚合酶延伸到超過蛋白編碼的部分，來形成“3未翻譯區域” (UTR)，該區域含調控性序列并幫助翻譯。腺嘌呤被添加到3UTR，轉錄組測序的標準方法基于 “poly(A)”尾巴的結合。
而在這篇文章中，研究人員提出了一種3P-Seq（poly(A)-position profiling by sequencing）方法，并利用這種方法分析線蟲的3 UTR，獲得了8580個額外的UTRs，從而解析了線蟲3 UTR的形成，調控和進化。
這種3P-Seq的原理如下圖，首先將一種配體（splint-ligation）與帶有生物素引物綁定位點的poly(A)結合（步驟1），然后通過T1核酶部分消化（步驟2）， 再洗脫捕捉poly(A)，并且與加入的dTTP作用。之后再利用RNase H釋放，最終用到高通量測序中去。這種方法精度更高，而且可以避免“poly(A)”方法的局限性。
Bartel教授研究組近期還發現了MiRNA影響mRNA的機制，他們發現miRNA主要通過使目標mRNA失去穩定性來發揮作用，而不是通過抑制它們的翻譯來發揮作用。這與之前的研究發現并不相同。
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